Gel technology is widely used for blood typing in human medicine. It has a number of advantages over routine tube testing, including standardization, stability, smaller sample volume, ease of performance and analysis, and speed. The aim of this study was to evaluate feline blood typing using the gel column technique. TUBE agglutination typing was performed in 143 feline blood samples from blood donors and recipients, healthy and sick patients, and whole-blood units anticoagulated with ethylenediamine tetraacetic acid or citrate phosphate dextrose adenine. Plasma from type B cats was used as anti-A reagent, Triticum vulgaris lectin as anti-B reagent, and the control was saline solution. Agglutination in backtyping of types B and AB samples with type A red blood cells (RBCs) was used to confirm whether the samples were type B (presence of alloantibodies) or type AB (absence of alloantibodies). Blood typing in a neutral gel column technique (GEL) using the same anti-A and anti-B reagents was performed on duplicate samples. Sensitivity, specificity, positive likelihood ratio, negative likelihood ratio, positive predictive value, negative predictive value, overall accuracy, and Cohen κ coefficient (κ) for GEL were calculated, with TUBE considered the gold standard technique. Of 143 samples typed with TUBE, 98 (68.5%) were type A, 25 (17.5%,) type B, and 20 (14.0%) type AB. Backtyping confirmed the categorization of all types B and AB samples. Of these samples, gel testing produced 115 (80.4%) concordant results; a mixed-field agglutination pattern (layers of RBCs at both the top and at the bottom of the gel in either the A or B gel column) was seen in 27 samples, and one type B sample was misidentified as type AB. If the mixed-field pattern was interpreted as a negative result, 141/143 (98.6%) samples showed concordant results with an overall accuracy of the GEL of 100.0% for type A, 98.9% for type B, and 99.1% for type AB. Strength of agreement was very good (κ = 0.97). When the same anti-A and anti-B reagents are used, GEL is a sensitive and specific method for blood typing feline samples. Until additional studies have been performed, mixed-field patterns obtained in GEL testing should be classified as negative results.

凝胶技术已广泛用于人类医学中的血液分型。与常规试管测试相比，它具有许多优势，包括标准化，稳定性，较小的样品量，易于执行和分析以及速度。这项研究的目的是使用凝胶柱技术评估猫的血型。在来自献血者和接受者，健康和患病患者以及用乙二胺四乙酸或柠檬酸磷酸葡萄糖腺嘌呤抗凝的全血单位的143个猫血样中进行TUBE凝集分型。B型猫的血浆用作抗A试剂，普通小麦凝集素为抗B试剂，对照为盐水溶液。在使用A型红细胞（RBC）对B型和AB型样品进行反型分型中的凝集反应可用于确定样品是B型（存在同种抗体）还是AB型（没有同种抗体）。在中性凝胶柱技术（GEL）中使用相同的抗A和抗B试剂对两份样品进行血型分析。用TUBE作为黄金标准技术，计算了GEL的敏感性，特异性，阳性似然比，阴性似然比，阳性预测值，阴性预测值，总体准确性和Cohenκ系数（κ）。在TUBE分型的143个样本中，A型98个（68.5％），B型25个（17.5％）和AB型20个（14.0％）。返样确认了所有B型和AB型样品的分类。在这些样本中 凝胶测试产生了115个（80.4％）一致的结果；在27个样品中观察到混合场凝集模式（在A或B凝胶柱中，在凝胶的顶部和底部都有RBC层），并且一个B型样品被误认为AB型。如果将混合场模式解释为否定结果，则141/143（98.6％）样品显示出一致的结果，A型的GEL的整体准确度为100.0％，B型的GEL的整体准确度为98.9％，AB型的GEL的整体准确度为99.1％ 。一致强度非常好（κ= 0.97）。当使用相同的抗A和抗B试剂时，GEL是对猫样本进行血型分析的灵敏且特定的方法。在进行其他研究之前，在GEL测试中获得的混合场模式应归类为阴性结果。在27个样品中观察到混合场凝集模式（在A或B凝胶柱中，在凝胶的顶部和底部都有RBC层），并且一个B型样品被误认为AB型。如果将混合场模式解释为否定结果，则141/143（98.6％）样品显示出一致的结果，A型的GEL的整体准确度为100.0％，B型的GEL的整体准确度为98.9％，AB型的GEL的整体准确度为99.1％ 。一致强度非常好（κ= 0.97）。当使用相同的抗A和抗B试剂时，GEL是对猫样本进行血型分析的灵敏且特定的方法。在进行其他研究之前，在GEL测试中获得的混合场模式应归类为阴性结果。在27个样品中观察到混合场凝集模式（在A或B凝胶柱中，在凝胶的顶部和底部都有RBC层），并且一个B型样品被误认为AB型。如果将混合场模式解释为否定结果，则141/143（98.6％）样品显示出一致的结果，A型的GEL的整体准确度为100.0％，B型的GEL的整体准确度为98.9％，AB型的GEL的整体准确度为99.1％ 。协议强度非常好（κ= 0.97）。当使用相同的抗A和抗B试剂时，GEL是对猫样本进行血型分析的灵敏且特定的方法。在进行其他研究之前，在GEL测试中获得的混合场模式应归类为阴性结果。其中一个B型样本被误认为AB型。如果将混合场模式解释为否定结果，则141/143（98.6％）样品显示出一致的结果，A型的GEL的整体准确度为100.0％，B型的GEL的整体准确度为98.9％，AB型的GEL的整体准确度为99.1％ 。一致强度非常好（κ= 0.97）。当使用相同的抗A和抗B试剂时，GEL是对猫样本进行血型分析的灵敏且特定的方法。在进行其他研究之前，在GEL测试中获得的混合场模式应归类为阴性结果。其中一个B型样本被误认为AB型。如果将混合场模式解释为否定结果，则141/143（98.6％）样品显示出一致的结果，A型的GEL的整体准确度为100.0％，B型的GEL的整体准确度为98.9％，AB型的GEL的整体准确度为99.1％ 。一致强度非常好（κ= 0.97）。当使用相同的抗A和抗B试剂时，GEL是对猫样本进行血型分析的灵敏且特定的方法。在进行其他研究之前，在GEL测试中获得的混合场模式应归类为阴性结果。当使用相同的抗A和抗B试剂时，GEL是对猫样本进行血型分析的灵敏且特定的方法。在进行其他研究之前，在GEL测试中获得的混合场模式应归类为阴性结果。当使用相同的抗A和抗B试剂时，GEL是对猫样本进行血型分析的灵敏且特定的方法。在进行其他研究之前，在GEL测试中获得的混合场模式应归类为阴性结果。