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Development of a simplified and inexpensive RNA depletion method for plasmid DNA purification using size selection magnetic beads (SSMBs)
Genes & Diseases ( IF 6.8 ) Pub Date : 2020-05-20 , DOI: 10.1016/j.gendis.2020.04.013
Xi Wang , Ling Zhao , Xiaoxing Wu , Huaxiu Luo , Di Wu , Meng Zhang , Jing Zhang , Mikhail Pakvasa , William Wagstaff , Fang He , Yukun Mao , Yongtao Zhang , Changchun Niu , Meng Wu , Xia Zhao , Hao Wang , Linjuan Huang , Deyao Shi , Qing Liu , Na Ni , Kai Fu , Kelly Hynes , Jason Strelzow , Mostafa El Dafrawy , Tong-Chuan He , Hongbo Qi , Zongyue Zeng

Plasmid DNA (pDNA) isolation from bacterial cells is one of the most common and critical steps in molecular cloning and biomedical research. Almost all pDNA purification involves disruption of bacteria, removal of membrane lipids, proteins and genomic DNA, purification of pDNA from bulk lysate, and concentration of pDNA for downstream applications. While many liquid-phase and solid-phase pDNA purification methods are used, the final pDNA preparations are usually contaminated with varied degrees of host RNA, which cannot be completely digested by RNase A. To develop a simple, cost-effective, and yet effective method for RNA depletion, we investigated whether commercially available size selection magnetic beads (SSMBs), such as Mag-Bind® TotalPure NGS Kit (or Mag-Bind), can completely deplete bacterial RNA in pDNA preparations. In this proof-of-principle study, we demonstrated that, compared with RNase A digestion and two commercial plasmid affinity purification kits, the SSMB method was highly efficient in depleting contaminating RNA from pDNA minipreps. Gene transfection and bacterial colony formation assays revealed that pDNA purified from SSMB method had superior quality and integrity to pDNA samples cleaned up by RNase A digestion and/or commercial plasmid purification kits. We further demonstrated that the SSMB method completely depleted contaminating RNA in large-scale pDNA samples. Furthermore, the Mag-bind-based SSMB method costs only 5–10% of most commercial plasmid purification kits on a per sample basis. Thus, the reported SSMB method can be a valuable and inexpensive tool for the removal of bacterial RNA for routine pDNA preparations.



中文翻译:

使用大小选择磁珠(SSMB)开发用于质粒DNA纯化的简化且廉价的RNA消耗方法

从细菌细胞中分离质粒DNA(pDNA)是分子克隆和生物医学研究中最常见,最关键的步骤之一。几乎所有的pDNA纯化都涉及细菌的破坏,膜脂质,蛋白质和基因组DNA的去除,从大量裂解物中纯化pDNA以及浓缩pDNA以用于下游应用。尽管使用了许多液相和固相pDNA纯化方法,但最终的pDNA制备物通常会被不同程度的宿主RNA污染,而这些RNA无法被RNase A完全消化。对于RNA消耗的方法,我们研究了市售的大小选择磁珠(SSMB),例如Mag-Bind®TotalPure NGS试剂盒(或Mag-Bind)是否可以完全消耗pDNA制剂中的细菌RNA。在这项原理验证研究中,我们证明,与RNase A消化和两种商业质粒亲和纯化试剂盒相比,SSMB方法在消除pDNA minipreps中的污染RNA方面非常有效。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。我们证明,与RNase A消化和两种商业质粒亲和纯化试剂盒相比,SSMB方法在消除pDNA minipreps中的污染RNA方面非常有效。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。我们证明,与RNase A消化和两种商业质粒亲和纯化试剂盒相比,SSMB方法在消除pDNA minipreps中的污染RNA方面非常有效。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。与RNase A酶切法和两种商业质粒亲和纯化试剂盒相比,SSMB方法在消除pDNA微量制备物中的污染RNA方面非常有效。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。与RNase A酶切法和两种商业质粒亲和纯化试剂盒相比,SSMB方法在消除pDNA微量制备物中的污染RNA方面非常有效。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。SSMB方法在消除pDNA微量制备物中的污染RNA方面非常有效。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。SSMB方法在消除pDNA微量制备物中的污染RNA方面非常有效。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。基因转染和细菌菌落形成分析表明,用SSMB方法纯化的pDNA的质量和完整性优于RNase A消化和/或商用质粒纯化试剂盒纯化的pDNA样品。我们进一步证明,SSMB方法完全消除了大规模pDNA样品中的污染RNA。此外,基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。基于Mag-bind的SSMB方法每个样品的成本仅为大多数商业质粒纯化试剂盒的5-10%。因此,所报道的SSMB方法可以是用于常规pDNA制备的去除细菌RNA的有价值且廉价的工具。

更新日期:2020-05-20
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