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A streamlined mass spectrometry-based proteomics workflow for large-scale FFPE tissue analysis.
The Journal of Pathology ( IF 7.3 ) Pub Date : 2020-03-10 , DOI: 10.1002/path.5420
Fabian Coscia 1, 2 , Sophia Doll 2 , Jacob Mathias Bech 3 , Lisa Schweizer 2 , Andreas Mund 2 , Ernst Lengyel 4 , Jan Lindebjerg 5 , Gunvor Iben Madsen 6 , José Ma Moreira 3 , Matthias Mann 1, 2
Affiliation  

Formalin fixation and paraffin-embedding (FFPE) is the most common method to preserve human tissue for clinical diagnosis, and FFPE archives represent an invaluable resource for biomedical research. Proteins in FFPE material are stable over decades but their efficient extraction and streamlined analysis by mass spectrometry (MS)-based proteomics has so far proven challenging. Herein we describe a MS-based proteomic workflow for quantitative profiling of large FFPE tissue cohorts directly from histopathology glass slides. We demonstrate broad applicability of the workflow to clinical pathology specimens and variable sample amounts, including low-input cancer tissue isolated by laser microdissection. Using state-of-the-art data dependent acquisition (DDA) and data independent acquisition (DIA) MS workflows, we consistently quantify a large part of the proteome in 100 min single-run analyses. In an adenoma cohort comprising more than 100 samples, total workup took less than a day. We observed a moderate trend towards lower protein identification in long-term stored samples (>15 years), but clustering into distinct proteomic subtypes was independent of archival time. Our results underscore the great promise of FFPE tissues for patient phenotyping using unbiased proteomics and they prove the feasibility of analyzing large tissue cohorts in a robust, timely, and streamlined manner. © 2020 The Authors. The Journal of Pathology published by John Wiley & Sons Ltd on behalf of Pathological Society of Great Britain and Ireland.

中文翻译:

用于大规模FFPE组织分析的基于质谱的简化蛋白质组学工作流程。

福尔马林固定和石蜡包埋(FFPE)是保存人体组织以进行临床诊断的最常用方法,而FFPE档案是生物医学研究的宝贵资源。FFPE材料中的蛋白质几十年来一直稳定,但迄今为止,通过基于质谱(MS)的蛋白质组学对其进行有效提取和简化分析已证明具有挑战性。本文中,我们描述了一种基于MS的蛋白质组学工作流程,可直接从组织病理学玻片上对大型FFPE组织群组进行定量分析。我们证明了该工作流程对临床病理标本和可变样本量的广泛适用性,包括通过激光显微解剖分离的低输入癌组织。使用最新的数据相关采集(DDA)和数据独立采集(DIA)MS工作流程,我们在100分钟的单次运行分析中始终对蛋白质组的大部分进行定量。在一个包含100多个样本的腺瘤队列中,总检查时间不到一天。我们观察到长期保存的样品(> 15年)中蛋白质鉴定率较低的趋势,但是聚类为不同的蛋白质组学亚型与归档时间无关。我们的结果强调了FFPE组织使用无偏蛋白质组学进行患者表型分析的巨大前景,它们证明了以健壮,及时和简化的方式分析大型组织队列的可行性。©2020作者。John Wiley&Sons Ltd代表大不列颠及爱尔兰病理学会出版的《病理学杂志》。总共花了不到一天的时间。我们观察到长期保存的样品(> 15年)中蛋白质鉴定率较低的趋势,但是聚类为不同的蛋白质组学亚型与归档时间无关。我们的结果强调了FFPE组织使用无偏蛋白质组学进行患者表型分析的巨大前景,它们证明了以健壮,及时和简化的方式分析大型组织队列的可行性。©2020作者。John Wiley&Sons Ltd代表大不列颠及爱尔兰病理学会出版的《病理学杂志》。总共花了不到一天的时间。我们观察到长期保存的样品(> 15年)中蛋白质鉴定率较低的趋势,但是聚类为不同的蛋白质组亚型与归档时间无关。我们的结果强调了FFPE组织使用无偏蛋白质组学进行患者表型分析的巨大前景,它们证明了以健壮,及时和简化的方式分析大型组织队列的可行性。©2020作者。John Wiley&Sons Ltd代表大不列颠及爱尔兰病理学会出版的《病理学杂志》。我们的结果强调了FFPE组织使用无偏蛋白质组学进行患者表型分析的巨大前景,它们证明了以健壮,及时和简化的方式分析大型组织队列的可行性。©2020作者。John Wiley&Sons Ltd代表大不列颠及爱尔兰病理学会出版的《病理学杂志》。我们的结果强调了FFPE组织使用无偏蛋白质组学进行患者表型分析的巨大前景,它们证明了以健壮,及时和简化的方式分析大型组织队列的可行性。©2020作者。John Wiley&Sons Ltd代表大不列颠及爱尔兰病理学会出版的《病理学杂志》。
更新日期:2020-03-10
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